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The Journal of Internal Korean Medicine > Volume 40(1); 2019 > Article
수컷 생쥐의 골다공증과 근위축에 대한 益智仁의 효과

Abstract

Objective

To investigate the effect of Alpiniae oxyphyllae fructus (AOF) on the alleviation of musculoskeletal disorders caused by aging, we conducted experiments on osteoporosis and muscle atrophy.

Methods

The experimental group was classified into a control group, aging-elicited (AE) group and AOF group. The control group comprised 8-week-old Institute of Cancer Research (ICR) mice. The AE and AOF groups were ICR mice at 50 weeks of age. For the AE group, 10 mL of distilled water was administered once a day for 180 days without any treatment. An AOF extract (0.54 g/kg) was dissolved in distilled water and administered to the mice in the AOF group once a day for 180 days.

Results

In the experiment on the alleviation of osteoporosis, the distribution of glucosaminoglycan in the bone matrix of the femoral bone was increased in the AOF group; moreover, the osteocalcin (OCN) positive reaction was increased and 8-OHdG positivity was decreased. In addition, AOF positively decreased RANKL, positively increased OPG, and positively decreased MMP-3. Muscle fiber loss in the endomysium following muscle degeneration of the quadriceps was reduced more in the AOF group compared with the AE group, and caspase-3 positive responses were also decreased. In addition, the 8-OHdG and p-lkB positivity in the AOF group decreased compared with the AE group, and the Myo-D positivity increased.

Conclusion

We found that increasing bone formation alleviates osteoporosis, and that reducing bone loss alleviates muscle atrophy by reducing muscle loss and increasing muscle development

I. 緖 論

체내의 골은 결합조직의 한 형태이며, 골세포와 골양조직에서 생산된 세포외 유기기질로 구성되어 있다. 골은 생체기관을 보호하고 견고한 성질로 운동을 가능하게 하며, 중력에 대한 부하를 지지한다. 또한 오래된 골은 지속적으로 흡수되고 새로운 골을 형성하는데, 이를 통해 압력과 장력을 견딜 수 있게 된다. 근육은 체중의 약 40~50%를 차지하는 인체에서 가장 큰 조직군으로 골격근은 남성체중의 약 40%, 여성체중의 32%를 구성하고 있고, 평활근과 심장근은 총 체중의 10%를 차지하고 있으며, 운동, 호흡, 심장박동 등과 같은 필수적인 기능을 담당하고 있다1-5.
이처럼 우리 몸을 보호, 지탱하고 운동 및 생명유지에 필요한 역할을 수행하고 있는 근골격계는 연령의 증가에 따라 골질량과 골밀도 및 근육량 감소가 나타난다. 골량은 실제 30대 이후의 건강한 남성에서 척추 골량을 기준으로 매년 2.3%씩 감소가 나타나며, 근육량은 50세 이상부터 해마다 1-2%씩 줄어들기 시작하여 80세가 되면 최대 근육량의 약 절반정도로 그 양이 크게 감소하는 것으로 알려져 있다6-8.
골량의 감소와 미세구조의 이상을 특징으로 하며 골이 약해져서 부러지기 쉬운 상태가 되는 전신적인 골격계 질환이 골다공증이며9, 나이가 들어감에 따른 점진적인 근육량의 감소를 근육감소증 또는 근위축증이라고 한다10. 즉, 골량의 감소가 지속적으로 나타날 경우 경미한 충격에도 쉽게 골절을 일으킬 수 있고, 근육량의 감소로 근력과 신진대사율, 최대 산소소모량의 감소가 발생할 수 있다11-13.
현대사회는 세계적으로 평균수명이 연장되었고, 노인 비율이 급증함에 따라 노인의 기능저하와 만성 퇴행성질환의 증가 등 노인문제가 우선적으로 해결되어야 할 사회적 문제로 대두되고 있다. 이에 노인의 삶의 질 향상과 노인질환에 쓰이는 사회 및 경제적 비용을 줄이기 위해 연령 증가로 나타나는 골다공증이나 근위축 등의 근골격계 이상에 대한 예방 및 치료법 연구가 필요하다.
골다공증에 대한 한의학적 실험연구는 주로 난소를 적출한 동물모델에 한약 추출물을 투여한 후의 변화를 관찰하는 방법으로 진행되었으나14-17 이는 모두 여성의 골다공증에만 국한되어 진행되고 있으며, 근위축의 경우 아직까지 진단기준이 모호한 상태라 이에 대한 실증적인 연구가 부족한 실정이다18. 게다가 각 질환에 대한 개별적인 연구만 진행했을 뿐 연령 증가에 따른 근골격계 이상에 대한 복합적 연구는 현재까지 진행되지 않았다.
한의학적으로 골다공증은 骨痿나 骨痺의 범주에 속하며, 腎陰虛나 腎陽虛가 주요 원인으로 滋陰强骨하거나 溫補腎陽의 치료법을 사용한다19. 근위축은 한의학에서 外傷勞損, 濕熱侵襲, 肝腎虛勞 등의 원인으로 발생하는 痿證에 해당하는 것으로 보며, 치료법으로는 活血化瘀, 淸熱潤燥, 祛邪通絡, 益氣建脾, 滋陰補益肝腎 등이 있다20. 또한 한의학에서 생장에 따른 신체 변화는 腎氣와 관련이 있으므로21, 연령의 증가에 따른 골다공증 및 근위축 등 근골격계 이상은 腎虛로 발생하는 것으로 생각되며, 補腎의 약물을 통하여 증상을 개선시킬 수 있을 것이라 추정된다.
益智仁은 생강과에 속하는 益智의 성숙한 果實로서 溫脾胃하고 補腎하며 固精澁血하는 효능으로 腎虛, 奪精, 膀胱虛寒, 小便不禁, 下血 등의 증상에 사용되었다22. 益智仁에 대한 연구로 신장기능 개선효과23, 음경해면체 평활근 이완효과24, 골 손실 및 파골세포 분화 억제효과25 등이 있으며, 이들 연구의 대부분은 益智仁의 補腎효과에 중점을 두고 진행되었다.
이에 저자는 益智仁이 노화로 인한 근골격계 이상에 개선효과가 있을 것이라 생각하였고, 대표적인 근골격계 이상인 골다공증과 근위축 증상을 중심으로 조직화학 및 면역조직화학적 방법을 이용하여 실험을 진행하였다.

II. 材料 및 方法

1. 실험동물

평균 몸무게 32±5 g의 8주령의 ICR계 수컷 생쥐(샘타코, 한국)와 평균 몸무게 60±8 g의 50주령 ICR계 수컷 생쥐(중앙실험동물, 한국)를 사용하였으며 모든 동물은 고형사료와 물을 충분히 공급하면서 1주 이상 일정한 온도(25±2 ℃)와 습도(50±5%)가 유지되는 실험실 환경에 적응시킨 후 사용하였다.
본 동물실험은 세명대학교 동물실험윤리위원회의 승인(smecac 18-12-04)하에 실시되었다.

2. 益智仁 추출물 제조

益智仁(Alpiniae Oxyphyllae Fructus, AOF)은 세명대학교 부속 제천한방병원에서 구입하여 사용하였다. 益智仁 300 g을 round flask에 넣고 증류수 3000 ml을 첨가한 후 100 ℃에서 2시간 동안 가열 추출하였다. 추출한 다음 rotary evaporator(Eyela, Japan)로 감압 농축하였고, 농축액은 동결건조기로 건조하여 분말 17.09 g(17.6%)을 제조하여 실험에 사용하였다.

3. 실험군의 설정 및 益智仁 추출물의 투여

실험군은 총 27마리로, 각각 9마리씩 정상군(control group)과 노화군(aging-elicited group, AE group), 益智仁 추출물군(Alpiniae Oxyphyllae Fructus group, AOF group)으로 분류하였으며, 정상군은 아무런 처치를 하지 않은 8주령의 ICR계 생쥐를 사용하였고, 노화군과 益智仁 추출물군은 50주령의 ICR계 생쥐를 사용하였다. 노화군은 별다른 처치 없이 증류수 10 ml를 180일 동안 투여하였고, 益智仁 추출물군은 益智仁 추출물(0.54 g/kg)을 증류수 10 ml에 녹여 1일 1회씩 180일 동안 투여하였다.

4. 골다공증 개선효과 측정

1) 조직 표본 제작

180일의 실험을 마친 후 181일째 흰쥐를 ether로 마취하여 대퇴골을 적출한 후 대퇴골 주위의 지방 및 근육들을 제거하고 실온에서 24시간 동안 10% neutral buffered formalin(NBF)에 고정하였으며, 고정된 대퇴골은 탈회액(decalcification solution, BBC, UK)에 12시간 처리하고 세척한 후 통상적인 방법으로 파라핀에 포매하여 5 μm 두께로 연속절편을 만들었다.

2) 뼈조직내 미세환경 관찰을 위한 조직화학

대퇴골 내 glucosaminoglycan(GAG)의 분포변화를 조사하기 위해 Safranin-O-fast green(S/F) 염색을 실시한 후 광학현미경(BX51. Olympus, Japan)으로 관찰하였다.

3) 뼈조직내 미세환경 관찰을 위한 면역조직화학

골내 칼슘침적에 관여하는 osteocalcin(OCN)과 산화스트레스에 의한 유전자손상에 관여하는 8-OHdG의 분포변화를 조사하기 위해 mouse anti OCN와 mouse anti 8-OHdG를 이용한 면역조직화학적 염색을 실시하였다. 우선 뼈조직절편을 proteinase K (20 μg/ml)에 5분 동안 proteolysis 과정을 거친 후 blocking serum인 10% normal goat serum에서 2시간 동안 반응시켰다. 그리고 1차 항체인 mouse anti OCN(1:50, Santa Cruz Biotec, USA)과 mouse anti 8-OHdG(1:100, Santa Cruz Biotec, USA)에 4 ℃ humidified chamber에서 72시간 동안 반응시켰다. 그런 다음 2차 항체인 biotinylated goat anti-mouse IgG1(1:100, DAKO, USA)에 실온에서 24시간 link 하였고, 그런 다음 avidin biotin complex kit(Vector Lab, USA)에 1시간 동안 실온에서 반응시켰다. 0.05% 3,3’-diaminobenzidine과 0.01% HCl이 포함된 0.05M tris-HCl 완충용액(pH 7.4)에서 발색시킨 후, hematoxylin으로 대조염색하였다.

4) 골다공증 발병 조절 관찰을 위한 면역조직화학

골다공증 발병기전에 관여하는 Reaction of activation of nuclear factor kappa B ligand(RANKL, 1:50, Santa Cruz Biotec, USA)와 osteoprotegerin(OPG, 1:50, Santa Cruz Biotec, USA) 그리고 골성조직의 분해에 관여하는 MMP-3(1:50, Santa Cruz Biotec, USA)의 변화를 관찰하기 위해 면역조직화학적 염색을 실시하였다.

5. 근위축 개선효과 측정

1) 조직 표본 제작

흰쥐를 ether로 마취하여 대퇴사두근을 적출한 후 주위의 지방조직들을 제거하고 실온에서 24시간 동안 10% NBF에 고정하였으며, 고정된 조직은 통상적인 방법으로 paraffin에 포매한 후 5 μm 두께의 연속절편으로 제작되었다.

2) 근육퇴화 조절효과 관찰을 위한 조직화학

대퇴사두근의 근육퇴화에 따른 근육속막(endomysium)내 근유섬유의 변화를 보기 위해 Phloxine-tartrazine 염색법을 실시한 후 광학현미경(BX51. Olympus, Japan)으로 관찰하였다.

3) 근육퇴화 조절효과 관찰을 위한 면역조직화학

산화스트레스에 의한 유전자손상에 관여하는 8-OHdG 변화를 관찰하기 위해 면역조직화학적 염색을 실시하였다. 우선 근육절편을 proteinase K (20 μg/ml)에 5분 동안 proteolysis 과정을 거친 후 blocking serum인 10% normal goat serum에서 2시간 동안 반응시켰다. 그리고 1차 항체인 mouse anti 8-OHdG(1:100, Santa Cruz Biotec, USA)에 4 ℃ humidified chamber에서 72시간 동안 반응시켰다. 그런 다음 2차 항체인 biotinylated goat anti-mouse IgG2a(1:100, DAKO, USA)에 실온에서 24시간 link 하였고, 그런 다음 avidin biotin complex kit(Vector Lab, USA)에 1시간 동안 실온에서 반응시켰다. 0.05% 3,3’-diaminobenzidine과 0.01% HCl이 포함된 0.05 M tris-HCl 완충용액(pH 7.4)에서 발색시킨 후, hematoxylin으로 대조염색하였다.

4) 근육재생 조절효과 관찰을 위한 면역조직화학

근육재생조절 효과를 관찰하기 위해 근막내 염증에 관여하는 p-IkB(1:250, Santa Cruz Biotec, USA), 근육내 세포자멸사에 관여하는 caspase-3 (1:100, Santa Cruz Biotec, USA) 그리고 근육재생에 관여하는 Myo-D(1:50, Santa Cruz Biotec, USA)등의 변화를 관찰하기 위해서 면역조직화학적 염색을 실시하였다.

6. 영상분석과 통계처리

면역조직화학 결과를 조사하기 위해 Image pro Plus(Media Cybernetic, USA)을 이용한 영상분석 (image analysis)을 실시하여 수치화(means±standard error) 했다. 각 군의 표본에서 임의로 선정된 지역을 x200배율에서 촬영한 다음 positive pixels/20,000,000 pixels로 영상분석 하였다. 통계는 SPSS software(SPSS 23, SPSS Inc., USA)를 사용하였으며, one-way ANOVA 시행을 통해 유의성(P<0.05)을 검증하고 Duncan’s multiple range test로 사후 검증하였다.

III. 結 果

1. 益智仁이 골다공증에 미치는 영향

1) 뼈조직내 미세환경에 미치는 영향

대퇴골의 치밀뼈내 뼈기질에서 glucosaminoglycan (GAG) 분포 변화를 관찰한 결과, control군의 대퇴골보다 AE군의 대퇴골에서 분포가 감소하였으며, AOF군에서는 AE군에 비해 치밀뼈내 뼈기질 유실지역에서 GAG의 분포가 증가하였다.
Fig. 1
Changes in glucosaminoglycan (GAG) distribution in the bone matrix of the femur.
S/F : Safranin-O-fast green stain, Ctrl : control group, AE : aging-elicited group, AOF : Alpiniae Oxyphyllae Fructus group, BM : bone marrow, Arrow : positive reaction, Bar size : 50 μm
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2) 뼈조직내 칼슘침적에 미치는 영향

뼈내 칼슘침적에 관여하는 osteocalcin(OCN)의 분포변화를 관찰한 결과, 노화된 AE군 생쥐의 대퇴골에서 OCN 양성반응은 감소하였지만, AOF군에서는 AE군에 비해 104% 증가하였다.
Fig. 2
Changes in the distribution of osteocalcin (OPC) in the femur.
OPC : osteocalcin immunohistochemistry, Ctrl : control group, AE : aging-elicited group, AOF : Alpiniae Oxyphyllae Fructus group, BM : bone marrow, Arrow : positive reaction, Bar size : 50 μm
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Table 1
OPC Positive Reaction Change in the Femur of Mouse
Objective Group

Control AE AOF
OPC 76,690 ±1,483 22,733 ±885 46,477 ±1,121***

Values are mean±deviation (n=10). Image analysis for 20,000,000 pixel cells.

*** p<0.001 compared with AE.

3) 뼈조직내 산화스트레스에 미치는 영향

산화스트레스에 의한 유전자손상에 관여하는 8-OHdG의 분포변화를 관찰한 결과, 노화된 AE군 생쥐의 대퇴골 조직 내에서 8-OHdG 양성반응은 증가하였지만, AOF군에서는 AE군에 비해 49% 감소하였다.
Fig. 3
Distribution of 8-OHdG in the femur.
8-OHdG, 8-OHdG immunohistochemistry, Ctrl : control group, AE : aging-elicited group, AOF : Alpiniae Oxyphyllae Fructus group, BM : bone marrow, Arrow : positive reaction, Bar size : 50 μm
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Table 2
8-OHdG Positive Reaction Change in the Femur of Mouse
Objective Group

Control AE AOF
8-OHdG 9,798 ±338 70,134 ±830 35,712 ±1,104***

Values are mean±deviation (n=10). Image analysis for 20,000,000 pixel cells.

*** p<0.001 compared with AE.

4) 골다공증 발병기전에 미치는 영향

골다공증 발병기전에 관여하는 RANKL과 OPG, 골성조직의 분해에 관여하는 MMP-3의 변화를 관찰하였다.
노화된 AE군 생쥐의 RANKL 양성반응은 control군에 비해 증가하였지만, AOF군에서는 AE군에 비해 60% 감소하였으며, OPG 양성반응은 control군에 비해 AE군에서 감소하였지만, AOF군에서는 AE군에 비하여 113% 증가하였다. 또한 MMP-3 양성반응은 노화된 AE군에서는 증가하였지만, AOF군에서는 AE군에 비해 36% 감소하였다.
Fig. 4
Changes in RANKL, OPG, and MMP-3 in the femur.
RANKL : RANKL immunohistochemistry, OPG : OPG immunohistochemistry, MMP-3 : MMP-3 immunohistochemistry, Ctrl : control group, AE : aging-elicited group, AOF : Alpiniae Oxyphyllae Fructus group, BM : bone marrow, Arrow : positive reaction, Bar size : 50 μm
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Table 3
RANKL, OPG, MMP-3 Positive Reaction Change in the Femur of Mouse
Objective Group

Control AE AOF
RANKL 9,623 ±586 71,334 ±974 35,789 ±1,033**
OPG 62,399 ±1,072 14,744 ±807 31,429 ±1,118***
MMP-3 5,233 ±404 66,051 ±1,305 42,305 ±1,299***

Values are mean±deviation (n=10). Image analysis for 20,000,000 pixel cells.

*** p<0.001 compared with AE.

2. 益智仁이 근위축에 미치는 영향

1) 근육속막내 근육섬유에 미치는 영향

대퇴사두근의 근육퇴화에 따른 근육속막(endomysium)내 근육섬유의 변화를 관찰한 결과, 노화된 AE군 생쥐에서 근육속막내 근육섬유의 소실이 관찰되었다. 하지만 AOF군에서는 AE군에 비해 근육속막내 근육섬유의 소실이 감소하였다.
Fig. 5
Muscle fiber changes in endomysium by muscle degeneration.
P/T : Phloxine-tartrazine stain, Ctrl : control group, AE : aging-elicited group, AOF : Alpiniae Oxyphyllae Fructus group, Arrow : positive reaction, Bar size : 50 μm
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2) 근육내 산화스트레스에 미치는 영향

산화스트레스에 의한 유전자손상에 관여하는 8-OHdG 변화를 관찰한 결과, 노화된 AE군 생쥐의 근육내 8-OHdG 양성반응은 증가하였다. 하지만 AOF군에서는 AE군에 비해 근육내 8-OHdG 양성반응이 53% 감소하였다.
Fig. 6
Changes in 8-OHdG involved in gene damage caused by oxidative stress.
8-OHdG : 8-OHdG immunohistochemistry, Ctrl : control group, AE : aging-elicited group, AOF : Alpiniae Oxyphyllae Fructus group, Arrow : positive reaction, Bar size : 50 μm
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Table 4
8-OHdG Positive Reaction Change in the Quadriceps Muscle
Objective Group

Control AE AOF
8-OHdG 3,881 ±273 53,200 ±1,764 24,781 ±953***

Values are mean±deviation (n=10). Image analysis for 20,000,000 pixel cells.

*** p<0.001 compared with AE.

3) 근막 내 염증에 미치는 영향

근막 내 염증에 관여하는 p-IkB 변화를 관찰한 결과, 노화된 AE군 생쥐의 근막 내에서 p-IkB 양성반응은 증가하였다. 하지만 AOF군의 p-IkB 양성반응은 AE군에 비해 50% 감소하였다.
Fig. 7
Changes in p-IkB involved in intrafascial inflammation.
p-lkB : p-lkB immunohistochemistry, Ctrl : control group, AE : aging-elicited group, AOF : Alpiniae Oxyphyllae Fructus group, Arrow : positive reaction, Bar size : 50 μm
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Table 5
p-IkB Positive Reaction Change in the Quadriceps Muscle
Objective Group

Control AE AOF
p-IkB 3,755 ±354 30,820 ±1,322 15,291 ±1,097***

Values are mean±deviation (n=10). Image analysis for 20,000,000 pixel cells.

*** p<0.001 compared with AE.

4) 근육 내 세포자멸사에 미치는 영향

근육 내 세포자멸사에 관여하는 caspase-3 변화를 관찰한 결과, 노화된 AE군 생쥐의 근육내에서 caspase-3 양성반응은 증가하였다. 하지만 AOF군에서는 AE군에 비해 54%의 caspase-3 양성반응 감소가 관찰되었다.
Fig. 8
Changes in caspase-3 involved in intramuscular apoptosis.
Caspase-3 : Caspase-3 immunohistochemistry, Ctrl : control group, AE : aging-elicited group, AOF : Alpiniae Oxyphyllae Fructus group, Arrow : positive reaction, Bar size : 50 μm
jikm-40-1-1f8.jpg
Table 6
Myo-D Positive Reaction Change in the Quadriceps Muscle
Objective Group

Control AE AOF
Caspase-3 3,760 ±369 56,176 ±1,633 25,863 ±1,073***

Values are mean±deviation (n=10). Image analysis for 20,000,000 pixel cells.

*** p<0.001 compared with AE.

5) 근육재생에 미치는 영향

근육재생에 관여하는 Myo-D 변화를 관찰한 결과, 노화된 AE군 생쥐의 Myo-D 양성반응은 control군에 비해 감소하였다. 하지만 AOF군에서는 Myo-D 양성반응이 AE군에 비해 147% 증가하였다.
Fig. 9
Changes in Myo-D involved in muscle regeneration.
Myo-D : Myo-D immunohistochemistry, Ctrl : control group, AE : aging-elicited group, AOF : Alpiniae Oxyphyllae Fructus group, Arrow : positive reaction, Bar size : 50 μm
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Table 7
Myo-D Positive Reaction Change in the Quadriceps Muscle
Objective Group

Control AE AOF
Myo-D 62,003 ±1,402 10,838 ±501 26,749 ±871***

Values are mean±deviation (n=10). Image analysis for 20,000,000 pixel cells.

*** p<0.001 compared with AE.

IV. 考 察

골은 주로 Ca2+으로 구성된 세포외 유기기질 또는 osteoid로 구성되어 있는 살아있는 조직으로, 침착과 흡수가 정상적으로 동시에 일어나 항상 재형성이 이루어지고 있다. 골 속에는 조골세포, 파골세포 등 두 가지 유형의 골세포가 존재하는데, 조골세포는 칼슘결정이 침착하게 되는 세포외 유기 기질을 분비하고, 파골세포는 근처의 골을 흡수하는 세포로 칼슘결정을 녹이는 산과 유기 기질을 분해하는 효소를 분비한다. 이렇듯 조골세포가 파골세포와 대응하는 일정한 세포성 줄다리기가 계속 발생하면서 골은 재형성되며, 이를 통해 골의 형성과 흡수속도는 거의 동일하게 일어나서 전체 골량은 일정하게 유지된다. 하지만 이러한 균형에 변화가 생겨 골의 형성보다 흡수가 더 많을 경우 전체 골량은 감소하게 되며 경미한 충격에도 쉽게 골절이 발생할 수 있는 골다공증이 발생하게 된다.
근육은 근육세포들의 결합조직으로, 수축운동을 통하여 개체의 이동, 자세유지 및 체액분비 등을 담당하는 신체기관이다. 근육은 일반적으로 체성 근육조직으로 이루어져있는 골격근과 심장에 위치하는 심장근, 내장에서 발견되는 평활근의 세 형태로 분류된다. 남자 체중의 40%, 여자 체중의 32%를 차지하는 골격근의 경우 근육계의 기본구조인 근섬유로 구성되어 있으며, 근섬유는 또한 다양한 근섬유 단백질로 구성되어 있다. 하나의 근육은 수천 개의 근섬유로 구성되어 있고, 근섬유를 둘러싸고 있는 세포막인 근육속막(근초)은 화학적, 전기적 자극에 의해 흥분되며 신호를 전달하는 특성이 있다. 이러한 근육은 건에 의해 양 끝이 골에 연결되어 있으며, 이를 통해 수축, 이완의 작용을 하게 된다1-2. 하지만 근섬유 단백질의 분해가 증가될 경우 전체 근육량의 감소가 나타나는데, 점진적인 근육량 감소의 가장 큰 원인은 노화에 의한 근육량의 감소이며 이로 인해 근위축 증상이 발생한다26.
연령 증가에 의한 노화로 장기무게의 감소, 자율신경계 활동 저하, 호르몬 분비 저하, 연령 증가에 따른 점진적인 근육량 감소, 골질량 및 골격근의 감소 등이 일어난다27. 보통 인체의 활동에 관여하는 골과 근육을 합하여 근골격계라고 부르는데, 연령이 증가함에 따라 골다공증 및 근위축 등의 근골격계 이상이 발생하고, 이로 인해 신체 기능의 저하, 활동 감소, 낙상 및 골절, 보행장애, 쇠약 외에 대사 관련 질환도 발생할 수 있으므로7,8,28 이에 대한 대비책의 일환으로 노화에 따른 근골격계 이상에 대해 특별한 관심이 필요하다.
현재 사용되고 있는 골다공증 치료법은 경구용 약물로 크게 골흡수 억제제와 골형성 촉진제로 구분되지만 대부분 골흡수 억제제의 영역에 속한다. 하지만 이 약물들은 속쓰림, 구역질, 궤양 등의 소화기 자극 증상이나, 안면홍조, 관상동맥질환의 위험도 증가, 유방암, 뇌졸중 등의 유발가능성이 높다는 부작용이 있다29,30. 또한 근위축에 대한 치료법으로 저항 훈련 등이 효과가 있다고 알려져 있지만31 훈련법에 대한 자세한 설명 및 기준이 제시되어 있지는 않으며, 현재까지 권장되는 치료제는 없다. 따라서 기존 치료제의 부족한 점 및 부작용을 보완하면서 골다공증과 근위축 등에 모두 효과를 나타낼 수 있는 치료제의 개발이 요구된다.
한의학에서는 사람의 수명이 腎氣가 연관이 있다고 하여 연령이 증가함에 따라 腎氣가 소모된다고 하였고21, 腎主骨이라 하여 骨과 腎이 밀접한 관계를 가지고 있으므로 노화에 따른 골다공증은 腎虛가 주요 원인이 되는 骨痿, 骨痺와 부합한다고 하였다19. 또한 근위축은 筋骨痿軟이 主가 되는 痿證의 범주에 속한다고 하였으며, 이에 대한 治法으로 滋陰淸火, 淸肺潤燥, 補益脾胃, 調補肝腎 등이 중시되었다20. 즉, 연령의 증가에 따른 근골격계 이상인 골다공증과 근위축은 모두 腎氣의 不足이 원인이 될 수 있으며, 補腎하는 약물을 응용하여 치료할 수 있을 것이라 생각된다.
益智仁은 性味는 辛溫하고 補腎溫脾의 효능으로 예로부터 신장질환 및 배뇨조절에 효능이 있는 약재로 알려져 왔다22. 益智仁에 대한 연구로 이 등23은 益智仁이 허혈-재관류로 인한 급성 신부전 백서에서 허혈성 급성신부전으로 인해 발생하는 증상들을 회복시켜 신장기능의 장애를 개선시킨다고 보고하였고, 박 등24은 益智仁 추출물이 prostacyclin과, eNOS를 통한 NO의 생성 증가로 평활근에서의 cGMP 농도를 증가시키고, 세포외 Ca2+의 유입을 차단하는 경로를 통하여 음경해면체 이완효과를 나타낸다고 하였으며, 하 등25은 益智仁 물 추출물이 RANKL로 유도된 파골세포 분화를 억제함으로써 골 소실에 대해 보호효과를 드러낸다고 보고하였다. 이렇듯 益智仁에 대한 많은 연구가 補腎작용에 중점을 두고 진행되어 왔지만 노화에 따른 근골격계 변화에 복합적으로 미치는 영향에 관한 연구는 없다.
이에 저자는 益智仁이 補腎작용이 노화로 인한 근골격계 이상에 개선효과가 있을 것이라 생각하여 대표적인 근골격계 이상인 골다공증과 근위축을 중심으로 연구를 진행하였다.
益智仁이 골다공증에 미치는 영향에 대한 연구에서 대퇴골의 치밀뼈내 뼈기질에서 glucosaminoglycan (GAG) 분포는 AE군에 비하여 AOF군에서 증가하였다. GAG는 반복성 이당류의 기본구조를 갖는 선상 구조의 다당류로, 외부로부터의 압력에 기계적으로 저항하는 힘을 세포외기질에 부여하며 콜라겐 합성뿐만 아니라 섬유모세포의 증식에도 영향을 준다32-34. 따라서 GAG의 분포가 益智仁으로 인해 증가되었다는 결과를 통해 益智仁이 노화로 인해 발생한 뼈기질의 손상을 감소시킴으로써 골다공증을 개선시킨다는 사실을 알 수 있다.
Osteocalcin은 골형성에 중요한 기질단백 중 하나로, 세포외 비교원성 유기물질 중 10-20%를 차지하며, 골절 치유 및 골형성 과정의 뼈모세포와 유골기질에서 강하게 발현되고 골형성 과정이 진행되면서 점차 소실된다35. 따라서 OCN 양성반응이 AE군에 비해 AOF군에서 증가되었다는 것은 益智仁의 골다공증 개선효과가 뼈모세포의 활성 증가를 통한 골 형성을 통해 일어난다는 사실을 알려준다.
그리고 산화스트레스에 의한 유전자손상에 관여하는 8-OHdG의 분포는 AE군에 비해 AOF군에서 감소하였다. 산화스트레스는 세포내 DNA를 손상시켜 신경세포를 사망하게 하고 노화를 유발할 수 있다36. 즉, 8-OHdG 양성반응이 益智仁에 의하여 감소하였으므로 益智仁이 골 내 산화스트레스의 감소에 관여하여 골다공증 개선효과를 나타내는 것으로 생각된다.
RANKL은 RANK이라는 수용체와 결합하여 대식세포에서 파골세포로 분화를 촉진하고 파골세포의 세포자멸사를 억제함으로써 파골세포의 작용을 증가시키며, MMP-3은 관절의 연골조직 구성성분을 분해하는 효소이다37,38. 반면 OPG는 RANKL과 결합하여 RANK의 작용을 차단함으로써 파골세포의 작용은 억제시키고 조골세포의 작용을 촉진시킨다2. RANKL과 MMP-3 양성반응이 감소되고 OPG 양성반응이 증가된 결과는 益智仁이 뼈 흡수와 연골조직의 구성성분 분해를 억제하면서 조골세포에 의한 뼈 형성을 촉진하여 골다공증 개선효과를 나타내는 것으로 생각된다.
다음으로 益智仁이 근위축에 미치는 영향에 대한 연구에서 대퇴사두근의 근육퇴화에 따른 근육속막(endomysium)내 근섬유의 변화를 관찰한 결과, 노화된 AE군 생쥐에서 관찰된 근섬유의 소실이 AOF군에서는 감소하였고, caspase-3 양성반응도 益智仁 투여로 감소하였다. Caspase는 세포의 DNA 복제 및 유전자 발현과 관련된 단백질과, 핵의 구조유지, 세포의 항상성 유지 등과 관련된 단백질들을 파괴시키거나 관련된 단백질의 활성 증가로 세포사멸을 유도하는 물질이다39. 즉, 益智仁은 근육내 세포자멸사를 감소시켜 근섬유의 소실을 억제함으로써 근위축을 개선하는 것으로 생각된다.
또한 근육내 산화스트레스에 의한 유전자손상에 관여하는 8-OHdG 양성반응은 AE군에 비하여 AOF군에서 감소하였고, 근막내 염증 발생 시 분비되는 p-IkB 양성반응도 AE군에 비하여 AOF군에서 비해 감소하였다. 이로써 益智仁의 근위축 개선효과는 산화스트레스 및 근막내 염증을 감소시킴으로써 나타난다는 사실을 알 수 있다.
Myo-D는 근육세포의 핵과 satellite cell에서 발현되는 근세포생성과정의 중요한 조절인자의 일종으로 근세포가 아닌 세포를 근세포로 전환시키는 능력이 있으며, 근세포 분화에도 관여한다40. 따라서 노화된 AE군 생쥐에서 감소된 Myo-D 양성반응이 AOF군에서 증가한 결과는 益智仁이 근세포수를 증가시켜 근육생성에 관여함으로써 근위축을 개선한다는 사실을 나타낸다.
위의 결과를 종합하면, 益智仁은 뼈모세포의 활성 증가 및 파골세포 작용 억제, 골내 산화스트레스 감소와 연골조직의 구성성분 분해를 억제하여 뼈기질의 손상을 감소시킴으로써 골다공증을 개선하는 것으로 생각된다. 또한 益智仁은 근육내 세포자멸사를 감소시켜 근섬유의 소실을 억제하고 근세포수를 증가시켜 근육생성에 관여하며, 산화스트레스 및 근막내 염증을 감소시킴으로써 근위축을 개선하는 것으로 생각된다. 이상의 결과를 통해 益智仁은 노화로 인한 근골격계 이상인 골다공증과 근위축을 모두 개선시키는 효과가 있다는 사실을 알 수 있으며, 이를 바탕으로 노화로 인한 골다공증과 근위축을 모두 개선하는 약물로 활용할 수 있을 것이라 생각된다.

V. 結 論

補腎의 작용이 뛰어난 益智仁이 노화로 인한 근골격계 이상의 개선에 미치는 영향을 검증하기 위하여 대표적인 근골격계 이상인 골다공증과 근위축을 중심으로 실험을 진행하여 다음과 같은 결과를 얻었다.
먼저 益智仁이 골다공증의 개선에 미치는 영향에 대한 실험을 진행한 결과, 대퇴골의 치밀뼈 내 뼈기질에서 glucosaminoglycan(GAG) 분포는 AE군에 비하여 AOF군에서 증가하였고, OCN 양성반응과 OPG 양성반응은 증가하였으며, 8-OHdG 양성반응, RANKL 양성반응, MMP-3 양성반응은 감소하였다.
다음으로 益智仁이 근위축의 개선에 미치는 영향에 대한 실험을 진행한 결과, 대퇴사두근의 근육퇴화에 따른 근육속막(endomysium)내 근섬유의 소실이 AE군에 비해 AOF군에서는 감소하였고, caspase-3 양성반응과 8-OHdG 양성반응, p-IkB 양성반응도 감소하였으며, Myo-D 양성반응은 증가하였다.
위의 결과를 종합하면, 益智仁은 뼈의 형성을 증가시키고 뼈의 소실을 감소시킴으로써 골다공증을 개선하는 것으로 생각되며, 근육의 소실 감소 및 근육생성 증가, 산화스트레스 및 근막내 염증을 감소시킴으로써 근위축을 개선하는 것으로 생각된다. 이상의 결과를 통해 益智仁이 노화로 인한 근골격계 이상인 골다공증과 근위축을 모두 개선시키는 효과를 가진다는 사실을 알 수 있다.

감사의 글

이 논문은 2018학년도 세명대학교 교내학술연구비 지원에 의해 수행된 연구임.

참고문헌

1. Sherwood L. Human Physiology 2016. 9th ed. Seoul: Life science: p. 732–787-8.

2. Translated by professors from national medical university. Review of medical physiology 2002. 18th ed. Seoul: Hanwoori: p. 67–70, 412.

3. Nader GA. Molecular determinants of skeletal muscle mass:getting the “AKT” together. Int J Biochem Cell Biol 2005:Oct;37(10):1985–96.
crossref pmid
4. Ehrenborg E, Krook A. Regulation of skeletal muscle physiology and metabolism by peroxisome proliferator-activated receptor delta. Pharmacol Rev 2009:Sep;61(3):373–93.
crossref pmid
5. Frontera WR, Ochala J. Skeletal muscle:a brief review of structure and function. Calcif Tissue Int 2015:Mar;96(3):183–95.
crossref pmid
6. Orwoll ES, Oviatt SK, McClung MR, Deftos LJ, Sexton G. The rate of bone mineral loss in normal men and the effects of calcium and cholecalciferol supplementation. Ann Intern Med 1990:Jan 1; 112(1):29–34.
crossref pmid
7. Won HS. Age-related changes in body growth, muscle protein content and cellular-mediated immunity and rats fed stock diets. Korean J food and Nutr 1991:4(2):133–9.

8. Rosenberg IH. Sarcopenia:origins and clinical relevance. J Nutr 1997:May;127(5 Suppl):990S–991S.
crossref pmid pdf
9. Korean Journal of Bone metabolism. Physicians guide for diagnosis &treatment of osteoporosis 2008:

10. Kwan H, Kim SB. Aging and sarcopenia. J Korean Geriatr Soc 2007:11(2):55–9.

11. Choi SR. A study on climacteric women's risk of osteoporosis. The Graduate School of Public Administration 2002. Hanyang university:Dept. of Nursing Administration:

12. Hughes VA, Frontera WR, Wood M, Evans WJ, Dallal GE, Roubenoff R, et al. Longitudinal muscle strength changes in older adults:influence of muscle mass, physical activity, and health. J Gerontol A Biol Sci Med Sci 2001:May;56(5):B209–17.
crossref pmid pdf
13. Dutta C. Significance of sarcopenia in the elderly. J Nutr 1997:May;127(5 Suppl):992S–993S.
pmid
14. Kum CJ, Cho CY, Lim JM, Song DU, Kim JH, Lee BN, et al. Effects of Yoohyangheukho-dan on osteoporosis induced by ovariectomy in rats. JKMR 2014:July;24(3):29–37.

15. Han SG, Kim DC. Anti-climacterium effects of Gagamguibiondam-tang in ovariectomized rats. J Korean Obstet Gynecol 2017:30(4):18–44.
crossref
16. Cho SY, Kim DC. Anti-osteoporotic Activity of Gojineumja Aqueous Extracts on the Ovariectomized Mice. J Korean Obstet Gynecol 2018:31(4):16–38.

17. Cho CY, Kim EY, Kim DH, Kim MB, Kim SB, Yang KJ, et al. Effects of Bia-hwan (Féiér-wán) on the Ovariectomized Rat Model of Osteoporosis. JKMR 2017:July;27(2):19–27.

18. Cruz-Jentoft AJ, Landi F, Topinková E, Michel JP. Understanding sarcopenia as a geriatric syndrome. Curr Opin Clin Nutr Metab Care 2010:Jan;13(1):1–7.
crossref pmid
19. Kim JY, Song YS. East-West medical examination of osteoporosis. J of Oriental Rehabiliation Medicine 1996:6(1):293–315.

20. Rehabilitation Medicine Science Class at National Oriental Medicine College. Rehabilitation Medicine Science 1995. Seoul: Seowondang: p. 149–281.

21. Medical College of Nanjing University of Traditional Chinese Medicine. Interpretation of the Yellow Emperor's Internal Classics 1983. Shanghai: Shanghai Science and Technology Press: p. 4–5.

22. Kim JH, Kim YS, Lee SH, Choi G, Jeong SI, Ju YS. Chemical components of herbal medicines in Ungok herbology 2016. 2nd ed. Jeonju: Woosuk press: p. 236.

23. Lee HO. Renoprotective effect of Alpiniae oxyphyllae Fructus on ischemia/reperfusion-induced acute renal failure in rats. Professional Graduate school of Oriental Medicine 2009. Wonkwang university:Dept. of Herbal resources:

24. Park SY. The relaxation effects of Alpiniae Oxyphyllae Fructus on isolated corpus cavernosum smooth muscle. Kor J Herbol 2015:30(4):61–9.

25. Ha H, Shim KS, Kim T, Lee CJ, Park JH, Kim HS, et al. Water extract of the fruits of Alpinia oxyphylla inhibits osteoclast differentiation and bone loss. BMC Complement Altern Med 2014:Sep 23; 14:352.
crossref pmid pmc pdf
26. Cruz-Jentoft AJ, Baeyens JP, Bauer JM, Boirie Y, Cederholm T, Landi F, et al. Sarcopenia:European consensus on definition and diagnosis:Report of the European Working Group on Sarcopenia in Older People. Age Ageing 2010:Jul;39(4):412–23.
crossref pmid pmc pdf
27. Prado CM, Wells JC, Smith SR, Stephan BC, Siervo M. Sarcopenic obesity:A Critical appraisal of the current evidence. Clin Nutr 2012:Oct;31(5):583–601.
crossref pmid
28. Rossi P, Marzani B, Giardina S, Negro M, Marzatico F. Human skeletal muscle aging and the oxidative system:cellular events. Curr Aging Sci 2008:Dec;1(3):182–91.
crossref pmid
29. Choi WH. Medical treatment of osteoporosis:non-hormonal therapy. Hanyang Journal of Medicine 2002:Mar;22(1):19–26.

30. Lim SK. The recent trend in osteoporosis research. Biochemistry News 2002:22(3):207–6.

31. Cortez-Cooper MY, Anton MM, Devan AE, Neidre DB, Cook JN, Tanaka H. The effects of strength training on central arterial compliance in middle-aged and older adults. Eur J Cardiovasc Prev Rehabil 2008:Apr;15(2):149–55.
crossref pmid
32. Lindahl U, Höök M. Glycosaminoglycans and their binding to biological macromolecules. Annu Rev Biochem 1978:47:385–417.
crossref pmid
33. Varki A, Cummings RD, Esko JD, Freeze HH, Stanley P, Bertozzi CR, et al. Essentials of Glycobiology 2009. 2nd ed. Newyork: Cold Spring Harbor Laboratory Press:

34. Castor CW. Connective tissue activation. V. The flux of connective tissue activating peptide during acute inflammation. J Lab Clin Med 1973:Jan;81(1):95–104.
pmid
35. Hauschka PV. Osteocalcin:the vitamin K-dependent Ca2+-binding protein of bone matrix. Haemostasis 1986:16(3-4):258–72.
pmid
36. Beckman KB, Ames BN. The free radical theory of aging matures. Physiol Rev 1998:Apr;78(2):547–81.
crossref pmid
37. Woessner JF Jr. Matrix metalloproteinases and their inhibitors in connective tissue remodeling. FASEB J 1991:May;5(8):2145–54.
crossref pmid
38. Shingleton WD, Ellis AJ, Rowan AD, Cawston TE. Retinoic acid combines with interleukin-1 to promote the degradation of collagen from bovine nasal cartilage:matrix metalloproteinases-1 and -13 are involved in cartilage collagen breakdown. J Cell Biochem 2000:Sep 14; 79(4):519–31.
crossref pmid
39. Metcalf KS, Selby PJ, Trejdosiewicz LK, Southgate J. Culture of ascitic ovarian cancer cells as a clinically-relevant ex vivo model for the assessment of biological therapies. Eur J Gynaecol Oncol 1998:19(2):113–9.
pmid
40. Ishido M, Kami K, Masuhara M. In vivo expression patterns of MyoD, p21, and Rb proteins in myonuclei and satellite cells of denervated rat skeletal muscle. Am J Physiol Cell Physiol 2004:Aug;287(2):C484–93.
crossref pmid
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